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Técnicas Procedimientos de enfermería

Terapia de Candado o Lock Terapia: Descripción

Tiempo de lectura: 6 minutos

Terapia de Candado o Lock Terapia

La terapia de candado o lock terapia se ha posicionado como una herramienta crucial en la práctica clínica moderna, especialmente en pacientes con catéteres venosos centrales. Esta técnica consiste en sellar el lumen del catéter con una solución de antibióticos en concentraciones suficientes para erradicar microorganismos en el biofilm interno, minimizando así el riesgo de infecciones y complicaciones asociadas.

En este artículo, exploraremos en detalle los fundamentos, aplicaciones y beneficios de esta estrategia terapéutica, resaltando su papel en la reducción de infecciones relacionadas con dispositivos intravasculares.

¿Qué es la terapia de candado o lock terapia?

La terapia de candado o lock terapia es un procedimiento diseñado para prevenir y tratar infecciones relacionadas con los catéteres venosos centrales. Se utiliza una solución concentrada de antibióticos o agentes antimicrobianos que se introduce en el lumen del catéter.

Esta solución permanece allí durante un período definido (generalmente entre horas o días), creando un “sellado interno” que ataca los microorganismos presentes en el biofilm, una película bacteriana que se adhiere a las superficies internas del catéter.

Terapia de candado o lock terapia: Prevención y tratamiento de infecciones en catéteres venosos centrales.

Importancia del biofilm en las infecciones del catéter

El biofilm es una matriz compleja compuesta por bacterias y otros microorganismos que se adhieren a las superficies internas del catéter. Esta película no solo protege a las bacterias de los mecanismos de defensa del huésped, sino que también dificulta la acción de los antibióticos administrados sistémicamente.

La terapia de candado o lock terapia aborda este problema directamente, proporcionando concentraciones elevadas de agentes antimicrobianos en el lugar exacto donde se desarrollan las infecciones.

Indicaciones de la terapia de candado o lock terapia

La terapia de candado o lock terapia está indicada en varias situaciones clínicas, incluyendo:

  • Prevención de infecciones: En pacientes con alto riesgo de infecciones relacionadas con el catéter, como aquellos en tratamiento de hemodiálisis, quimioterapia o nutrición parenteral.
  • Tratamiento de infecciones leves a moderados: Especialmente en casos donde las infecciones se limitan al biofilm sin signos sistémicos graves.
  • Mantenimiento de catéteres a largo plazo: En pacientes que requieren el uso continuo de catéteres, esta técnica reduce el riesgo de infecciones recurrentes.

Procedimiento de la terapia de candado o lock terapia

El procedimiento para implementar la terapia de candado o lock terapia incluye los siguientes pasos:

  1. Selección del agente antimicrobiano: El antibiótico o solución antimicrobiana debe seleccionarse según los microorganismos más probables o los identificados en cultivos.
  2. Preparación del catéter: El catéter debe estar limpio y libre de obstrucciones antes de introducir la solución.
  3. Administración de la solución: Se introduzca la solución en el lumen del catéter, asegurándose de que llene completamente el espacio interno.
  4. Tiempo de sellado: La solución se deja en el catéter durante un tiempo definido, que puede variar según las recomendaciones clínicas y la naturaleza de la infección.
  5. Extracción de la solución: Después del período de acción, la solución es retirada o reemplazada según sea necesario.

Terapia de candado – Cuidados de Enfermería

La terapia de candado o lock terapia consiste en realizar un sellado interno del catéter venoso central con una solución que posee concentraciones suficientes de antibiótico para eliminar microorganismos que crecen en el biofilm interno del dispositivo.

Cuidados:

1.Uso en conjunto con terapia antibiótica endovenosa.

2. La duración de la terapia de candado es la misma que la terapia antimicrobiana sistémica (recomendación de 10-14 días).

3. La terapia de candado generalmente es usada cuando el catéter infectado, puede ser bloqueado por un mínimo de 8 a 12 horas.

4. Los antibióticos son preparados en suero fisiológico.

5. Las concentraciones de las soluciones de la terapia de candado recomendadas son:

a) Vancomicina: 2,5 mg/ml – 5mg/ml
b) Gentamicina: 1 – 5mg/ml
c) Ceftazidima: 0,5 mg/ml – 2mg/ml
d) Cefazolina: 0,5 mg/ml
e) Ciprofloxacino: 0,2mg/ml
f) Amikacina: 2 mg/ml
g) Linezolid: 2 mg/ml

6. Está contraindicada cuando el catéter venoso central tiene indicación de retiro.

7. El volumen de solución de antibiótico o antifúngico puede ser instilado de la siguiente forma:

Broviac o Hickman de un lumen (importante: si ha sido modificado durante su instalación en pabellón, ej. Recorte de longitud, es fundamental manejar la longitud de catéter in situ y el total de volumen que puede instilarse).
≥ 5 french: 0,8 ml
6,5 french 1,3 ml

Broviac o Hickman doble lumen
5 french 1,3 ml
7 french 2,3 ml

Catéter venoso central con reservorio, ej. Porth a cath de cualquier tamaño (no contempla volumen de extensor ni aguja). 2,3 ml

Catéter venoso central de 1 lumen
≤ 4 french : 0,4 ml
5-6 french : 0,7 ml
6,3 french : 0,9 ml

Catéter venoso central doble lumen
≤ 5 french
Lumen 1 = 0, 6 ml
Lumen 2 = 0, 6 ml

7 – 7, 5 french
Lumen 1 = 1, 1 ml
Lumen 2 = 0, 5 ml

9, 5 french
Lumen 1 = 2, 3 ml
Lumen 2 = 0, 6 ml

Catéter venoso central triple lumen
5 french
Todos los lúmenes: 0,6 ml

Catéter venoso central – Diámetro externo:  6 FR, 8 FR, 5 FR, 7 FR, 4 FR

8. El tiempo recomendado para la permanencia es de 8 a 12 horas una vez al día, ya que la eficacia puede verse reducida, cuando el tiempo de permanencia es menor. Sin embargo, períodos más cortos y frecuentes están permitidos cuando es necesario.

9. El mantenimiento del catéter infectado se realiza de la siguiente forma:

  • Instilar recorrido con suero fisiológico, antes y después de la terapia de candado.
  • Uso de heparina para prevenir la formación de coágulos (nota: como la heparina tiene compatibilidad limitada con estos antibióticos, se debe administrar separadamente en forma de bolo, no mezclar antibiótico y heparina en la misma jeringa).
  • Retiro de la terapia de candado cuando el tiempo de permanencia se ha completado.
  • La secuencia usual para administrarla es:

Retirar la terapia de candado (aspirar) – limpiar con suero fisiológico (instilar) – (administrar
antibiótico) terapia de candado – (administrar) heparina.

10. En relación a la terapia de candado con etanol no existen recomendaciones consensuadas actuales basadas en evidencia, por lo que su implementación debería basarse en decisiones locales de cada equipo.

Agentes utilizados en la terapia de candado o lock terapia

Diversos agentes antimicrobianos pueden emplearse en la terapia de candado o lock terapia, dependiendo del tipo de microorganismo y la resistencia antibiótica:

  • Antibióticos comunes: vancomicina, cefazolina y gentamicina, efectivos contra bacterias Gram-positivas y Gram-negativas.
  • Antifúngicos: Como el fluconazol, para infecciones causadas por hongos.
  • Soluciones anticoagulantes: Heparina combinada con antibióticos para prevenir trombosis asociada al catéter.
  • Novedades terapéuticas: Soluciones con etanol o taurolidina, conocidas por su capacidad para destruir biopelículas resistentes.

Beneficios de la terapia de candado o lock terapia

La terapia de candado o lock terapia ofrece numerosos beneficios en el manejo de catéteres venosos centrales:

  • Reducción de infecciones: Disminuye la incidencia de infecciones relacionadas con catéteres, mejorando la seguridad del paciente.
  • Preservación del acceso venoso: Evita la necesidad de retirar catéteres infectados, prolongando su vida útil.
  • Ahorro de costos: Minimiza hospitalizaciones prolongadas y el uso excesivo de antibióticos sistémicos.
  • Reducción de complicaciones: Al limitar las infecciones, también se reducen riesgos como septicemia y trombosis.

Riesgos y limitaciones de la terapia de candado o lock terapia

A pesar de sus beneficios, esta técnica no está exenta de riesgos y limitaciones:

  • Resistencia antimicrobiana: El uso repetido de antibióticos puede promover el desarrollo de cepas resistentes.
  • Reacciones adversas: En raras ocasiones, los agentes utilizados pueden causar irritación o toxicidad.
  • Contraindicaciones: No se recomienda en pacientes con infecciones sistémicas graves o cuando el catéter esté claramente comprometido.

Evidencias científicas y casos de éxito

Numerosos estudios respaldan la efectividad de la terapia de candado o lock terapia. Por ejemplo:

  • Ensayos clínicos: Han demostrado que el uso de soluciones de vancomicina o taurolidina reduce significativamente las infecciones relacionadas con catéteres en pacientes de hemodiálisis.
  • Casos clínicos: Informes individuales muestran cómo esta técnica ha permitido tratar infecciones persistentes sin la necesidad de retirar el catéter.

Preguntas frecuentes sobre la terapia de candado o lock terapia

¿Es segura la terapia de candado o lock terapia?
Sí, es seguro cuando se administra correctamente bajo supervisión médica. Sin embargo, es crucial seleccionar el agente antimicrobiano adecuado y seguir los protocolos establecidos.

¿Cuánto tiempo se debe dejar la solución en el catéter?
El tiempo varía según el protocolo, pero generalmente oscila entre 12 y 48 horas.

¿Puede la terapia de candado prevenir infecciones en todos los casos?
Si bien es altamente efectiva, no es infalible. Su éxito depende de factores como la técnica de inserción del catéter y el cuidado continuo.

¿Qué tipos de infecciones trata esta terapia?
Es particularmente efectivo contra infecciones leves a moderadas asociadas al biofilm bacteriano o fúngico del catéter.

¿Qué sucede si el tratamiento falla?
En casos de fracaso, puede ser necesario retirar el catéter y administrar tratamiento sistémico.

¿Es costoso este procedimiento?
Aunque puede parecer más costoso inicialmente, reduzca los costos a largo plazo al prevenir complicaciones y hospitalizaciones.


La terapia de candado o lock terapia representa una innovación clave en el manejo de infecciones relacionadas con catéteres venosos centrales. Su capacidad para atacar directamente el biofilm interno y prevenir complicaciones graves la convierte en una estrategia invaluable en la atención de pacientes críticos. A medida que se desarrollan nuevos agentes y protocolos, esta técnica continuará evolucionando, consolidando su lugar en la medicina moderna.


Información del Autor
  1. Plazas Lorena, Enfermera. Trabajo propio.
Fuentes consultadas
  1. Lizana C.; González C.; Villena R; 2011; Manual de Medicamentos Endovenosos; Unidad de Paciente Crítico; Hospital de Niños Dr. Exequiel González Cortés; Chile.
  2. Trissel’s IV-Chek. Wolters Kluwer Health, Inc. Copyright 2004-2011. Acceso mediante aplicación
    Redmedika, TEVA Enero 2010 a Junio 2011.
  3. https://www.medicalexpo.es/prod/uy/product-301459-1017037.html

Última actualización: [ 16/12/2024 ]

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Laboratorio Técnicas Unidad de Cuidados Intensivos y Coronarios

Infecciones: Torrente sanguíneo

Tiempo de lectura: 7 minutos

Infecciones: Torrente sanguíneo




Las infecciones del torrente sanguíneo son producidas mayormente cuando se insertan dispositivos como: CVP catéter venoso periférico o CVC catéter venoso central, especialmente los colocados en las unidades de cuidados intensivos (UCI).

El uso de un catéter venoso central CVC es proporcionar un acceso directo en una vena de grueso calibre para hacer grandes aportes parenterales, mediciones hemodinámicas o cubrir situaciones de emergencia. Cuando un paciente se encuentra con un CVC, se debe prestar suma atención a signos de infección por dicho catéter.

Cultivo de catéter

Uso preferente de la prueba

  • Diagnóstico de sepsis asociada a catéter venoso central.

Preparación e instrucciones al paciente

Antes de la toma de muestra, se deben considerar las siguientes recomendaciones:

  • Indicación de remoción del catéter: bacteriemia y/o sepsis persistente por más de 48 a 72 horas, presencia de complicaciones locales evidentes, presencia de complicaciones metastásicas (endocarditis infecciosa, embolia pulmonar o periférica), aislamiento de microorganismos difíciles de erradicar (levaduras, S. aureus, Pseudomonas spp), o según criterio médico clínico.
  • Cada vez que se retire un catéter venoso central con sospecha clínica de infección sistémica asociada a este dispositivo, se deben obtener hemocultivos por venopunción y enviar el extremo distal del catéter venoso central a estudio microbiológico.
  • Se indica sólo frente a sospecha de bacteriemia asociada a catéter venoso central, siempre en conjunto con un set de hemocultivos periféricos.
  • Se indica cultivo semicuantitativo de punta de catéter venoso central.
  • Se confirma una bacteriemia asociada a catéter venoso central si se recupera el mismo microorganismo aislado en hemocultivo periférico y en la punta del catéter con un recuento igual o mayor a 15 UFC.

Procedimiento

  • Desinfectar piel del sitio de inserción del catéter venoso central con alcohol.
  • Retirar el catéter venoso central mediante técnica aséptica.
  • Cortar e introducir en tubo estéril 5 cm. del extremo distal del catéter venoso central.
  • Técnica recomendada solo para puntas de catéter asociado a torrente sanguíneo.

Información general

  • Rangos de referencia: Negativo
    – Informe negativo
    – Colonización con recuento menor a 15 UFC
    – Informe positivo con recuento mayor o igual de 15 UFC
  • Método: Cultivo corriente / Técnica de Maki
  • Tipo de muestra:  Punta de Catéter Venoso Central
  • Tipo de tubo: Tubo estéril
  • Volumen mínimo necesario: 5 centímetros del extremo distal del catéter venoso central.
  • Condiciones de transporte: Los tubos se deben transportar tapados, en posición vertical, en un recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de derrames a temperatura ambiente. El formulario de solicitud de examen no debe estar en contacto con la muestra.
  • Tiempo de transporte: Antes de media hora desde la toma de muestra a temperatura ambiente.
Muestra para Punta de Catéter Venoso Central

Hemocultivo

Uso preferente de la prueba

  • Diagnóstico de agente etiológico causante de bacteriemias/fungemias.

Preparación e instrucciones al paciente

  • Las muestras tienen que tomarse idealmente antes de la administración de antimicrobianos y preferentemente, no tomarlas inmediatamente después de cirugía abdominal o de la ingestión de alimentos.
  • Se deben tomar al menos 2 frascos de hemocultivo, extraídos de sitios de punción diferentes (no de catéter).
  • Debe ser siempre la primera muestra a tomar si existe indicación de otros exámenes.
  • Si se sospecha endocarditis bacteriana se debe obtener un set de al menos 2 frascos de hemocultivo.
  • Si están negativos a las 24 horas, tomar un segundo set de hemocultivos.
  • Si se sospecha infección por anaerobios se debe reemplazar uno de los frascos de hemocultivo aerobio por uno anaerobio (solicitado al laboratorio y según disponibilidad).
  • El estudio de hemocultivo de hongos o microorganismos del grupo HACEK no requiere condiciones diferentes de toma de muestra ni frascos distintos, pero debe consignarse en el formulario de solicitud de examen que la muestra requiere cultivo para hongos o búsqueda de HACEK.
  • Si se requiere establecer bacteriemia asociada a catéter venoso central revise las prestaciones “Catéter, Cultivo de” o “Hemocultivos Cuantitativos” o “Hemocultivos, Tiempo Diferencial de”.

Procedimiento

  • La extracción debe ser realizada por personal entrenado.
  • Reunir el material, identificar los frascos con nombre y apellido del paciente, lavarse las manos e informar al paciente del procedimiento.
  • Elegir el sitio de punción y preparar la piel.
  • La limpieza debe ser con agua y jabón.
  • Antisepsia con alcohol de 70º.
  • Realizar la punción y extraer la muestra, inocular en los frascos previa desinfección de la goma con etanol 70º.
  • Repetir los pasos para el 2º frasco periférico (en sitio de punción diferente).
  • Eliminar material corto-punzante según norma, retirar los guantes y lavar las manos.

Información general

  • Rangos de referencia:  Negativo
  • Método: Cultivo de sangre en medio líquido automatizado BD BACTEC.
  • Tipo de muestra: Sangre por punción venosa periférica.
  • Tipo de tubo: Frascos de hemocultivos comerciales.
  • Volumen mínimo necesario: – Adultos y niños de más de 15 kilos: 8 a 10 mL de sangre en cada frasco.- Niños entre 1 y 6 años: 1 a 5 mL de sangre en cada botella.- Neonatos: mínimo 1 mL de sangre por cada botella.
  • Condiciones de transporte: Los frascos se deben transportar en posición vertical, en un recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de derrames a temperatura ambiente. El formulario de solicitud de examen no debe estar en contacto con la muestra.
  • Tiempo de transporte: Antes de 1 hora desde la toma de muestra
Frasco de Hemocultivo Pediátrico

Hemocultivos cuantitativos

Uso preferente de la prueba

  • Diagnóstico de sepsis asociada a catéter venoso central, para determinar si es necesario retirar el catéter venoso central.

Preparación e instrucciones al paciente

  • Se indica en caso de sospecha de sepsis asociada a catéter venoso central cuando no es posible retirar el catéter venoso central.
  • Esta técnica compara la concentración bacteriana presente en la sangre obtenida por una punción periférica y una muestra obtenida a través del catéter venoso central.
  • Permite descartar o confirmar que el catéter venoso central sea el foco de la sepsis, si no lo es, se debe mantener el catéter instalado.
  • El estudio consta de dos muestras:
    Hemocultivo periférico: Tomar hemocultivo periférico siguiendo las mismas indicaciones que para hemocultivos cualitativos, pero puncionar con jeringa con baño de heparina estéril.
    – En caso de pacientes adultos y niños mayores aspirar 1,5 a 3 mL de sangre.
    – Para pacientes de neonatología aspirar mínimo 1 mL de sangre.
    – Agregar al frasco la indicación “Sangre periférica”, eliminar la aguja y poner tapa estéril.
    Hemocultivo por catéter: Tomar hemocultivos a través del catéter.
    – Si se trata de niños y neonatos aspirar con jeringa sin heparina 0,2 mL de sangre y eliminar.
    – Si se trata de pacientes adultos aspirar 0,5 mL de sangre y eliminar.
  • Luego con jeringa heparinizada estéril aspirar 1,5 a 3 mL en adultos y niños mayores y mínimo 1 mL de sangre en neonatos.
  • Rotular “Sangre catéter”, además indicar el lumen si corresponde.
  • Eliminar aguja y poner tapa estéril.
  • Tomar muestras de cada uno de los lúmenes o el más utilizado (el de mayor riesgo).

Información general

  • Rangos de referencia: Negativo
  • Método: Cultivo corriente cuantitativo
  • Tipo de muestra: Sangre venosa periférica y sangre de catéter.
  • Tipo de tubo: Jeringa heparinizada con tapón estéril.
  • Volumen mínimo necesario:  Según lo indicado en la preparación e indicaciones al paciente.
  • Condiciones del transporte: Las jeringas se deben transportar en un recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de derrames a temperatura ambiente. El formulario de solicitud de examen no debe estar en contacto con la muestra
  • Tiempo de transporte: Antes de 1 hora desde la toma de muestra
Desinfección de la goma con etanol 70º

Tiempo diferencial de hemocultivos

Uso preferente de la prueba

  • Ayuda en el diagnóstico de infección del torrente sanguíneo asociada a catéter vascular central (ITS-CVC).
  • Esta metodología consiste en obtener hemocultivos pareados, central y periférico, comparando el tiempo diferencial de positividad de los cultivos cualitativos de la sangre obtenida a través del catéter y por venopunción, utilizando sistemas de hemocultivos automatizados.
  • Si hay una diferencia mayor a 2 horas entre el momento en que el hemocultivo central y el hemocultivo periférico se hacen positivos, es indicativo que el foco de la sepsis es el catéter central, con el mismo microorganismo y antibiograma.

Preparación e instrucciones al paciente

Antes de la toma de muestra, se debe tener en cuenta las siguientes recomendaciones:

  • Las muestras tienen que tomarse idealmente antes de la administración de antimicrobianos y preferentemente, no tomarlas inmediatamente después de cirugía abdominal o de la ingestión de alimentos.
  • Se debe tomar 1 frasco de hemocultivo por cada lumen del catéter, más sangre periférica en al menos 2 frascos de hemocultivo de dos venopunciones diferentes y en iguales volúmenes.
  • Los frascos deben ser recolectados en un intervalo no mayor a 30 minutos y respetando los volúmenes de llenado del tipo de frasco utilizado.
  • Identificar cada frasco según lugar anatómico, por ej: periférico 1, periférico 2, rama arterial, rama venosa, rama proximal, rama medial, rama distal, etc.




Procedimiento

  • La extracción debe ser realizada por personal entrenado.
  • Reunir el material, identificar los frascos con nombre y apellido del paciente, lavarse las manos e informar al paciente del procedimiento.
  • Para la toma periférica proceder igual que en la prestación “Hemocultivo”: elegir el sitio de punción y preparar la piel.
  • La limpieza debe ser con agua y jabón.
  • Antisepsia con alcohol de 70º.
  • Realizar la punción y extraer la muestra, inocular en el frasco previa desinfección de la goma con etanol 70º.
  • Consignar el volumen inoculado.
  • Repetir los pasos para el 2º frasco periférico (en sitio de punción diferente) inoculando el mismo volumen que en el 1º frasco.
  • Para la toma de sangre de catéter, desinfectar previamente el(los) puerto(s) del lumen del catéter con etanol 70º, dejar secar, extraer el volumen requerido e inocular el(los) frascos con igual volumen a los frascos periféricos.
  • Eliminar material corto-punzante según norma, retirar los guantes y lavar las manos.

Información general

  • Rangos de referencia: Negativo
  • Método: Cultivo de sangre en medio líquido automatizado BD BACTEC.
  • Tipo de muestra: Sangre por punción venosa periférica y catéter.
  • Tipo de tubo: Frascos de hemocultivos comerciales.
  • Volumen mínimo necesario:  Adultos y niños de más de 15 kilos: 8 a 10 mL de sangre en cada frasco. – Niños entre 1 y 6 años: 1 a 5 mL de sangre en cada botella.- Neonatos: mínimo 1 mL de sangre por cada botella.
  • Condiciones de transporte:  Los frascos se deben transportar en posición vertical, en un recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de derrames a temperatura ambiente. El formulario de solicitud de examen no debe estar en contacto con la muestra.
  • Tiempo de transporte:  Antes de 1 hora desde la toma de muestra.
Los frascos deben ser recolectados en un intervalo no mayor a 30 minutos

Información del autor
  1. Manual de toma de muestra. Unidad de Lab.Clinico-Complejo asistencial Dr. Sotero del Rio. Chile. Año 2018
  2. Lorena Plazas. Lic. en enfermeria. Trabajo propio.
  3. https://www.revista-portalesmedicos.com/revista-medica/protocolo-extraccion hemocultivos-oncologia-pediatrica/Imagen hemocultivo frasco
  4. https://odont.info/toma-de-muestras-para-diagnostico-microbiologico.html. Imagen

Última actualización: [11/08/2024]

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